1Дмитрук, КВ, Куриленко, ОО, Іщук, ОП, Убийвовк, ВМ, Сибірний, ВА, 1Федорович, ДВ, 1Сибірний, АА
1Інститут біології клітини НАН України, Львів
Nauka innov. 2010, 6(6):45-50
https://doi.org/10.15407/scin6.06.045
Рубрика: Науково-технічні інноваційні проекти Національної академії наук України
Мова: Українська
Анотація: 
За допомогою сайт-специфічного мутагенезу створено модифіковану форму ксилозоредуктази дріжджів Pichia stipitis зі зниженою спорідненістю до NADPH(H+). Одержано рекомбінантний штам P. stipitis з посиленою експресією модифікованої форми ксилозоредуктази, який характеризувався підвищеною в 1,3 раза продуктивністю алкогольної ферментації ксилози. Продуктивність алкогольної ферментації гідролізатів висівок та тирси сконструйованим штамом були також підвищені.
Ключові слова: Pichia stipitis, алкогольна ферментація, дріжджі, етанол, ксилоза
Посилання: 
1. Jeffries T.W., Jin Y.S. Metabolic engineering for improved fermentation of pentoses by yeasts // Appl. Microbiol. Biotechnol. — 2004. – Vol. 63. – Р. 495-509.
2. Van Maris A.J., Abbott D.A., Bellissimi E., et al. Alcoholic fermentation of carbon sources in biomass hydrolysates by Saccharomyces cerevisiae: current status // Antonie Van Leeuwenhoek. — 2006. — Vol. 90, № 4. — P. 391-418.
3. Jeffries T.W., Grigoriev I.V., Grimwood J., et al. Genome sequence of the lignocellulose-bioconverting and xylosefermenting yeast Pichia stipitis // Nat. Biotechnol. — 2007. — Vol. 25, № 3. — P. 319-326.
4. Lu P., Davis B.P., Hendrick J., Jeffries T.W. Cloning and disruption of the beta-isopropylmalate dehydrogenase gene (LEU2) of Pichia stipitis with URA3 and recovery of the double auxotroph // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 1998. – Vol. 49, № 2. – P. 141-146.
5. Sambrook J., Fritsh E.F., Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York. 1989.
6. Passoth V., Hahn-Hagerdal B. Production of a heterologous endo-1,4-beta-xylanase in the yeast Pichia stipitis with an O2-regulated promoter // Enzyme and Microbial Thechnologies. – 2000. – Vol. 26. – P. 781-784.
7. Gonchar M.V., Maidan M.M., Sibirny A.A. A new oxidase-peroxidase kit «Alcotest» for ethanol assays in alcoholic beverages // Food Technol. Biotechnol. — 2001. — Vol. 39. — P. 37-42.
8. Verduyn C., van Kleef R., Frank J., et al. Properties of the NAD(P)H-dependent xylose reductase from the xylosefermenting yeast Pichia stipitis // Biochem. J. – 1985. – Vol. 226. – P. 669-677.
9. Jeffries T., van Vleet J. Pichia stipitis genomics, transcriptomics, and gene clusters // FEMS Yeast Res. – 2009. – Vol. 9. – P. 793-807.
10. Petschacher B., Nidetzky B. Engineering Candida tenuis xylose reductase for improved utilization of NADH: antagonistic effects of multiple side chain replacements and performance of site-directed mutants under simulated in vivo conditions // Appl. Environ. Microbiol. – 2005. – Vol. 71, № 10. – P. 6390-6393.
11. Dmytruk O.V., Dmytruk K.V., Abbas C.A., et al. Engineering of xylose reductase and overexpression of xylitol dehydrogenase and xylulokinase improves xylose alcoholic fermentation in the thermotolerant yeast Hansenula polymorpha // Microb. Cell. Fact. – 2008. – Vol. 23. – P. 7-21.
12. Voronovsky A.A., Abbas C.A., Fayura L.R., et al. Development of a transformation system for the flavinogenic yeast Candida famata // FEMS Yeast Res. – 2002. – Vol. 2, № 3. – P. 381-388.